基因功能增益筛选,开启基因激活新纪元
在生命科学研究中,基因功能不仅需要"敲除"来研究其缺失效应,同样需要"激活"来探索其过表达的影响。传统的基因过表达方法需要构建表达载体,耗时费力且难以实现高通量筛选。更重要的是,外源过表达往往无法精准模拟基因的内源调控模式。
舒桐CRISPRa文库服务为您提供革命性的基因激活解决方案。通过直接激活内源基因表达,保留完整的调控元件和剪接模式,实现更生理性的基因功能研究。我们不仅提供工具,更是您基因功能增益研究的创新伙伴。

图1 CRISPRa文库作用机制示意图
CRISPR激活(CRISPRa)文库是基于失活Cas9(dCas9)融合转录激活结构域构建的强大基因上调工具。通过将dCas9与强力转录激活结构域(如VP64、VPR或SAM系统)融合,在sgRNA的引导下靶向基因启动子或增强子区域,实现内源基因的强力激活表达。
dCas9-激活结构域融合蛋白在sgRNA引导下,特异性结合到目标基因启动子上游-400bp至TSS区域,招募转录激活复合物,增强RNA聚合酶II的招募和转录启动,从而上调基因表达。
VP64系统:4个串联VP16激活结构域,实现中等强度激活(5-10倍);
VPR系统:VP64-p65-Rta三联激活结构域,激活强度可达10-100倍;
SAM系统(Synergistic Activation Mediator):dCas9-VP64结合修饰sgRNA招募额外激活因子,实现超强激活(可达1000倍以上)。
与外源过表达不同,CRISPRa直接激活内源基因,保留了:
完整的5'和3'非翻译区(UTR),保持mRNA稳定性和翻译调控;
天然的剪接模式和亚型比例,更符合生理状态;
染色质上下文和表观遗传调控,避免位置效应;
生理性的基因剂量,避免过度过表达的人工效应。

图2 CRISPRa核心技术原理及激活系统示意图
3. 舒桐一站式服务优势——您的科研加速器
传统CRISPR筛选实验需要协调多个环节:文库设计、载体构建、病毒包装、细胞筛选、测序分析……每个步骤都可能成为瓶颈。更让研究者头疼的是,不同环节往往需要对接不同供应商,沟通成本高、周期漫长、质量难以把控。
选择舒桐,您只需要一个决定!我们依托博士后科研工作站的强大研发团队,整合分子、细胞、病毒、生信、NGS五大专业部门,为您打通全流程七大关键环节:
步骤 | 服务内容 | 舒桐优势 |
① | 文库设计 | 生信团队自主设计算法,优化sgRNA特异性和敲除效率,覆盖全基因组或定制基因集 |
② | 文库合成 | 高通量合成平台,确保sgRNA序列准确性和文库多样性 |
③ | 载体构建 | 分子团队成熟克隆技术,高质量文库质粒制备,质检严格把关 |
④ | 慢病毒包装 | 病毒团队专业包装系统,高滴度、高活性,适用于难转染细胞(原代细胞、神经元等) |
⑤ | 细胞感染与筛选 | 细胞团队低MOI感染策略,确保每个细胞仅接受单一sgRNA;多种分选技术(流式、免疫荧光等)灵活应对 |
⑥ | 文库加压筛选 | 细胞团队根据研究目标设计筛选条件(药物处理、功能检测等),富集目标表型细胞群 |
⑦ | NGS测序与数据分析 | NGS团队高通量测序,生信团队深度数据分析,比较sgRNA丰度变化,提供完整生物信息学报告 |
博士后工作站,顶尖科研团队:依托博士后科研工作站,汇聚强大的博士后研发团队,具备深厚的学术背景和丰富的项目经验,为文库设计和数据分析提供专业保障;
多部门协作,全流程质控:整合分子生物学、细胞生物学、病毒包装、生物信息学、NGS测序五大专业部门,形成无缝衔接的服务链条,每个环节都有专业团队把关;
自主设计算法,更高敲除效率:自主研发的gRNA设计算法,结合生信团队深度优化,敲除效率高达60-90%,显著提升筛选成功率;
专业病毒包装平台,攻克难转染细胞:独立病毒包装部门,高滴度慢病毒制备技术,成功应用于原代细胞、神经元、免疫细胞等难转染细胞系;
一站式服务,省时省力省心:从文库设计到数据解读,全程一站式服务,您无需协调多个供应商,大幅降低沟通成本,缩短30-50%项目周期。
系统性激活基因表达,鉴定哪些基因的上调能够赋予肿瘤细胞药物抗性,为克服耐药提供新靶点。已成功应用于venetoclax、免疫检查点抑制剂等多种药物的抗性研究。
通过激活关键转录因子,实现细胞命运转变。相比外源过表达,内源激活保留了更完整的调控网络,转化效率更高、细胞状态更稳定。
对于GWAS研究鉴定的疾病风险位点,通过CRISPRa激活候选基因,验证其因果关系和致病机制。
激活限速酶或关键调控因子,优化代谢流分配,应用于工业菌株改造和生物合成。
通过靶向候选增强子区域,鉴定功能性增强子及其靶基因,绘制基因调控网络。
激活肿瘤抗原或免疫激活相关基因,增强肿瘤免疫原性,联合免疫疗法提升抗肿瘤效果,已成功应用于开发新型癌症疫苗策略。
6. 高分文献案例——看CRISPRa如何推动科学突破
文献信息:
Chow et al. (2019). Multiplexed activation of endogenous genes by CRISPRa elicits potent antitumor immunity. Nature Immunology, 20, 1494-1505.

图3 CRISPRa赋能肿瘤免疫治疗实验流程示意图
研究背景:免疫治疗已经改变了癌症治疗格局,但仍面临多重限制。研究者们设想:如果能直接在肿瘤细胞中激活内源抗原基因的表达,是否能增强肿瘤免疫原性,激发强大的抗肿瘤免疫反应?
技术方案: 研究团队开发了MAEGI(Multiplexed Activation of Endogenous Genes as Immunotherapy)策略,利用CRISPRa(SAM系统)直接在肿瘤细胞中激活内源基因表达,从而增强肿瘤抗原呈递,激发抗肿瘤免疫。
关键发现:
CRISPRa激活OVA抗原基因后,显著增强了T细胞对肿瘤细胞的识别和杀伤,E:T比为0.5:1时仍可诱导明显的肿瘤细胞凋亡;
作为细胞疫苗策略,CRISPRa处理的肿瘤细胞在预防和治疗模式中均展现出显著疗效;
将CRISPRa sgRNA文库通过AAV载体肿瘤内递送,可激发强大的抗肿瘤免疫,在多种癌症模型(包括乳腺癌、结肠癌)中有效;
精准靶向突变基因集的CRISPRa治疗,在建立的肿瘤模型中清除了大部分局部和远端肿瘤,展现出"异位效应"。
临床意义:这项开创性研究展示了CRISPRa在肿瘤免疫治疗中的巨大潜力。通过直接在肿瘤细胞中激活内源抗原,MAEGI策略克服了传统癌症疫苗的多重限制:无需体外抗原加载、无需预先知道特异性抗原、能够激活多种抗原以克服肿瘤异质性。这为开发新一代肿瘤免疫疗法开辟了全新方向,也展示了CRISPRa在临床转化中的巨大前景。
文献信息:Monahan et al. (2022). Generation of a CRISPR activation mouse that enables modelling of aggressive lymphoma and interrogation of venetoclax resistance. Nature Communications, 13, 4862.

图4 CRISPRa筛选venetoclax药物抗性实验流程示意图
研究背景:Venetoclax是一种BCL-2抑制剂,在慢性淋巴细胞白血病(CLL)和急性髓系白血病(AML)治疗中取得显著成功。然而,获得性耐药的出现成为临床治疗的主要挑战。研究者们需要系统性鉴定哪些基因的上调能够赋予venetoclax抗性。
技术方案:研究团队首先建立了表达CRISPRa(SAM系统)的小鼠模型,在Eμ-Myc背景下通过CRISPRa激活Bcl-2,构建出高度敏感venetoclax的淋巴瘤细胞系。随后,他们利用全基因组CRISPRa sgRNA文库对这些细胞进行venetoclax抗性筛选。
关键发现:
Eμ-Myc/CRISPRa/sgBcl-2小鼠快速发展出表达高水平BCL-2和MYC的侵袭性淋巴瘤,精准模拟了人类双打击淋巴瘤(DHL)
与标准Eμ-Myc淋巴瘤不同,BCL-2高表达淋巴瘤对venetoclax极度敏感(IC50: 5-10nM);
全基因组CRISPRa筛选明确鉴定出BCL-2家族成员A1(人类同源物BFL-1)是venetoclax抗性的主导驱动因子;
A1的激活不仅赋予venetoclax抗性,也扩展了BCL-2抑制剂的作用谱——揭示A1作为新的药物靶点的潜力。
临床意义:这项工作不仅建立了体内CRISPRa筛选平台,还在临床高度相关的淋巴瘤模型中鉴定了venetoclax抗性的关键机制。A1/BFL-1的发现为克服BCL-2抑制剂耐药提供了明确的药物开发靶点。更重要的是,该研究展示了CRISPRa在疾病建模和药物抗性机制研究中的独特价值——通过功能增益筛选,可以前瞻性地鉴定潜在的耐药机制,指导联合治疗策略的开发。
这些高分文献清晰展示了CRISPRa技术的变革性价值:
功能增益筛选独特优势:直接鉴定基因上调的功能效应,互补传统敲除筛选
内源激活生理性更强:保留完整调控元件,比外源过表达更接近真实生理状态
临床转化潜力巨大:从肿瘤免疫治疗到药物抗性研究,CRISPRa展现出广阔的应用前景
体内应用成为可能:AAV递送系统使CRISPRa能够直接在体内发挥作用
舒桐的一站式CRISPRa文库服务正是为了让您的研究也能达到这样的高度。从采用最新算法的文库设计,到SAM/VPR等多系统可选,再到专业的数据分析,我们为您打通每一个技术环节。
全基因组覆盖:涵盖人类、小鼠等模式生物的所有编码基因,或根据需求定制特定基因集
高效敲除:NHEJ介导的突变效率高达60-90%,确保可靠的基因功能失活
表型稳定:基因敲除为永久性改变,表型稳定且可遗传
高通量筛选:一次实验可同时评估数千个基因的功能,效率远超传统方法
成本效益:相比传统基因敲除方法,显著降低时间和经济成本
在基因功能研究的道路上,技术只是工具,真正的价值在于能否将复杂的技术转化为可靠的科学发现。选择舒桐,您获得的不仅是一项服务,更是一个科研伙伴:
我们拥有博士后科研工作站和强大的博后团队,具备深厚的学术背景和前沿的科研视野,能够为您的项目提供高水平的技术支持和学术建议
我们整合了分子、细胞、病毒、生信、NGS五大专业部门,形成高效协作的服务体系,每个环节都有专业团队保驾护航
我们深知每个研究项目的独特性,提供个性化的文库设计和筛选方案,而非千篇一律的标准化服务
我们拥有成熟的技术平台和丰富的项目经验,能够应对各种复杂细胞类型和实验需求,确保项目顺利推进
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让我们携手合作,将您的科研想法转化为高质量的研究成果。无论是发表高分文献,还是推动临床转化,舒桐都将是您最值得信赖的技术伙伴。
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参考文献
[1] Chow, R. D., et al. (2019). Multiplexed activation of endogenous genes by CRISPRa elicits potent antitumor immunity. Nature Immunology, 20, 1494-1505.
[2] Monahan, C. E., et al. (2022). Generation of a CRISPR activation mouse that enables modelling of aggressive lymphoma and interrogation of venetoclax resistance. Nature Communications, 13, 4862.
[3] Konermann, S., et al. (2015). Genome-scale transcriptional activation by an engineered CRISPR-Cas9 complex. Nature, 517, 583-588.
[4] Chavez, A., et al. (2015). Highly efficient Cas9-mediated transcriptional programming. Nature Methods, 12, 326-328.