PE-Tag先导编辑脱靶检测
1. 背景介绍
随着CRISPR等基因编辑技术在基因治疗领域的广泛应用,其安全性评估变得尤为重要。美国食品药品监督管理局(FDA)已明确要求对基因编辑产生的潜在脱靶效应进行全面评估。Prime Editor(PE)作为一种不依赖于双链断裂(DSB)的精准基因编辑技术,具有高精度和高特异性的特点,但其潜在的脱靶效应仍需系统性评估。
舒桐科技推出的Primer-Extension-Mediated tagging sequencing(PE-Tag)基因编辑脱靶检测平台,基于NGS技术实现对Prime Editor编辑活动的全基因组范围内精准捕获和分析。该技术通过在编辑位点引入特定标签序列,结合高通量测序技术,可全面检测PE系统在全基因组范围内的编辑活动,为科学研究和临床前安全性评估提供关键技术支持。客户可根据不同研究需求,灵活选择检测策略:体外纯化DNA的in vitro PE-Tag检测以实现高灵敏度全面筛查,以及模拟真实生物环境的in cells PE-Tag检测,确保脱靶分析结果的生物学相关性。
2. PE-Tag检测原理与灵活检测策略
PE-Tag技术是一种高灵敏度的全基因组范围内Prime Editor编辑活动检测方法,其原理是利用Prime Editor在编辑位点引入标签序列,然后通过特异性扩增和高通量测序实现全基因组编辑位点的检测。舒桐提供In vitro PE-Tag和In cells PE-Tag两种检测策略以满足不同研究需求:
2.1 In vitro PE-Tag(纯DNA层面检测)
(1)原理:利用纯化的PE2蛋白与含有标签序列的pegRNA在体外处理提取的基因组DNA,随后通过特异性扩增和高通量测序实现编辑位点的检测;
(2)优势:敏感性高、背景低、可检测更多低频脱靶位点,无需考虑细胞转染效率限制;
(3)适用场景:对脱靶检测灵敏度要求高的项目,初步筛选潜在脱靶位点,或不便于细胞转染的样本。

图1 In vitro PE-Tag建库原理
2.2 In cells PE-Tag(细胞层面检测)
(1)原理:通过细胞转染或电转将PE2蛋白和pegRNA导入活细胞中,使编辑在细胞内发生,更接近真实生物条件;
(2)优势:可反映细胞环境中的真实编辑情况,考虑了细胞屏障、染色质状态等因素的影响;
(3)适用场景:验证高置信度脱靶位点,模拟临床应用场景,评估在复杂生物环境中的编辑特异性。

图2 In cells PE-Tag建库原理
2.3 PE-Tag建库流程
PE-Tag建库流程主要包括:
(1)编辑体系引入:将PE2系统(蛋白、mRNA或质粒形式)与含有目标序列和标签的pegRNA导入反应体系(体外)或细胞(体内);
(2)标签整合:在活性位点(包括靶位点和脱靶位点)引入特定标签序列;
(3)片段化:使用Tn5转座酶对标记后的基因组DNA进行片段化,同时引入包含唯一分子标识符(UMI)的接头序列;
(4)通过PCR特异性扩增含有标签序列的DNA片段;
(5)使用高通量测序技术对扩增产物进行测序;
(6)通过专业生物信息学分析流程精确鉴定全基因组范围内的PE编辑位点。
3. PE-Tag与分析优势
3.1 全面捕获Prime Editor编辑活动
PE-Tag技术能够高效检测以下几类Prime Editor编辑事件:
(1)靶点编辑:精确检测目标位点的编辑效率和编辑模式;
(2)脱靶编辑:全面捕获全基因组范围内潜在的脱靶位点;
(3)pegRNA设计评估:评估不同pegRNA设计的特异性和脱靶风险。
3.2 技术特点与优势
(1)高特异性:特异性捕获Prime Editor活动位点,降低假阳性率;
(2)全基因组覆盖:不依赖于预测算法,真实反映编辑系统在全基因组范围内的活性;
(3)检测策略灵活:可根据项目需求选择in vitro或in cells检测模式,兼顾灵敏度与生物相关性;
(4)多样本类型适用:可用于体外纯化DNA、细胞株和体内样本分析;
(5)直接检测:基于真实的Prime Editor活动进行检测,而非间接推测;
(6)与多种PE系统兼容:适用于PE2、PEmax、epegRNA等多种Prime Editor系统的评估。
3.3 服务优势
(1)定制化检测方案:根据研究目的、样本类型和编辑系统,提供最适合的PE-Tag检测策略(in vitro或in cells);
(2)全面评估:提供包括靶位点和脱靶位点在内的完整PE编辑谱分析;
(3)多层次分析:从分子水平全面评估基因编辑的脱靶效应;
(4)灵活应用:适用于科研探索和临床前安全性评估;
(5)专业报告:提供包含编辑效率、脱靶位点分析和功能注释的专业分析报告;
(6)数据解读:提供专业的数据解读和技术咨询,辅助实验设计和结果分析。
4. 技术应用场景
4.1 应用领域
(1)基础科研应用:支持学术研究中Prime Editor系统的优化与改进;
(2)pegRNA设计优化:筛选特异性最高、脱靶风险最低的pegRNA序列;
(3)临床前安全性评价:为基因编辑药物的安全性评估提供数据支持;
(4)编辑系统比较:评估不同Prime Editor系统(如PE2、PEmax、epegRNA等)的编辑特异性;
(5)靶点安全性评估:评估不同治疗靶点的潜在脱靶风险;
(6)药物研发支持:为基因治疗药物开发提供关键的安全性数据。
5. PE-Tag检测报告内容
舒桐科技提供的PE-Tag分析报告采用标准化格式,确保数据呈现的专业性与完整性。报告前部分包含项目背景与技术原理介绍、PE-Tag建库流程说明以及生物信息学分析流程概述,为客户提供必要的技术背景。随后是样本测序数据统计部分,详细整理了样本数据质控信息与比对结果,确保数据质量可靠性。除此之外,报告还包含以下核心内容:
(1)脱靶位点鉴定结果:系统展示通过PE-Tag鉴定到的潜在脱靶位点,包括脱靶位点位置信息、位点序列、与靶序列的匹配度以及UMI计数等关键数据。

图3 PE-Tag示例报告(脱靶位点鉴定)
(2)脱靶序列比对可视化:通过直观的序列比对图谱,展示脱靶位点与pegRNA序列的相似性与差异,标注关键的错配位点,帮助客户直观理解脱靶位点的序列特征与原因。


图4 PE-Tag示例报告(脱靶序列比对可视化)
(3)脱靶位点基因注释:对鉴定到的脱靶位点进行功能注释分析,包括最近基因、位置特征(外显子、启动子区等)以及是否涉及致癌基因等关键信息,评估脱靶事件的潜在生物学影响。

图5 PE-Tag示例报告(脱靶位点基因注释)
6. PE-Tag检测服务内容
服务流程 | 服务内容 |
项目咨询与评估 | 评估靶点特性,推荐最适合的检测策略(in vitro或in cells),制定个性化检测方案,进行项目报价 |
样本接收与质检 | 严格按标准对样本进行全面质检,确保符合建库要求 |
pegRNA设计与验证(可选) | 设计包含特定标签序列的pegRNA,并验证其编辑活性 |
PE-Tag专业建库 | 根据选定的检测策略(in vitro或in cells),执行标准化建库流程:PE2 RNP处理、Tn5标签化及文库扩增 |
高通量测序 | 文库质检合格后进行PE150测序,确保数据质量 |
生物信息学分析 | 使用专业算法进行全基因组范围内PE编辑位点的鉴定与分析 |
专业报告交付 | 提供标准化分析报告,含技术解读与咨询服务 |
IND申报支持 | 可按客户需求提供符合ICH Q2(R1)和FDA要求的方法学验证报告 |
*服务周期:标准流程20-30个工作日;
*服务特色:可提供从pegRNA设计到结果分析的一体化服务支持,根据研究需求灵活选择in vitro或in cells检测策略。
7. PE-Tag检测样本要求
类别 | 具体要求 |
基础服务选项 | ·可免费设计pegRNA并构建质粒; ·可提供细胞转染及后续建库测序服务(客户需提供细胞系); ·可单独提供建库测序服务(客户需提供合格DNA样本); ·可根据研究需求选择in vitro或in cells检测策略。 |
DNA样本标准 | ·总量:待检测的DNA样本Qubit定量大于等于2ug; ·浓度:≥900ng/μL; ·纯度:OD260/280=1.8~2.0; ·完整性:无降解(需提供凝胶电泳检测图)。 |
客户需同时提供样本信息 | ·样本类型及名称; ·编辑靶点信息; ·pegRNA序列信息(RTT-PBS序列); ·切割位点坐标; ·编辑类型说明(核苷酸替换/插入/缺失)。 |
增值服务 | ·一体化服务(从靶点设计到数据分析); ·个性化分析(根据项目需求定制); ·技术咨询支持; ·不同检测策略的比较分析(同时进行in vitro和in cells检测)。 |
*注:①所有样本必须符合上述质量标准,以确保检测结果的准确性和可靠性;②客户也可以寄送组织或细胞渣样本用于DNA提取,组织要求重量>50mg,细胞渣要求>2×10^5;③对于特殊样本类型,请提前与舒桐技术团队沟通(电话 15336557985;产品订购/技术支持 service@generulor.com)。
8. 参考文献
[1] Liang, S. Q., Liu, P., et al. (2023). Genome-wide profiling of prime editor off-target sites in vitro and in vivo using PE-tag. Nature Methods, 20(5), 738-748.
[2] Anzalone, A. V., et al. (2019). Search-and-replace genome editing without double-strand breaks or donor DNA. Nature, 576(7785), 149-157.
[3] Chen, P. J., et al. (2021). Enhanced prime editing systems by manipulating cellular determinants of editing outcomes. Cell, 184(22), 5635-5652.
[4] Nelson, J. W., et al. (2021). Engineered pegRNAs improve prime editing efficiency. Nature Biotechnology, 40(3), 402-410.
[5] Liu, P., et al. (2021). Improved prime editors enable pathogenic allele correction and cancer modelling in adult mice. Nature Communications, 12(1), 2121.
[6] Gao, R., et al. (2022). Genomic and transcriptomic analyses of prime editing guide RNA-independent off-target effects by prime editors. CRISPR Journal, 5(2), 276-293.